Зеленый флуоресцирующий белок

Автор работы: Пользователь скрыл имя, 16 Апреля 2012 в 17:35, реферат

Описание

Зеленый флуоресцирующий белок (GFP) используется в качестве прижизненного маркера, позволяющего исследовать многообразные процессы, происходящие внутри живых клеток и организмов, что ранее было практически невозможным. Этот белок кодируется одним геном, его хромофор образуется из трех аминокислотных остатков Ser65–Tyr66–Gly67 путем внутренней посттрансляционной автокаталитической циклизации, которая не требует каких бы то ни было кофакторов или субстратов. Слияние GFP с другими белками обычно не влияет на активность, подвижность и локализацию этих белков в клетке.

Работа состоит из  1 файл

GFP.docx

— 49.56 Кб (Скачать документ)

     Была  продемонстрирована эффективность исследования FRET между мутантами GFP в белке слияния в качестве внутриклеточного индикатора NO. В этой работе для прямого изучения взаимодействия между металлотионеином (МТ) и NO в живых клетках авторы получили белок слияния, состоящий из МТ, расположенного между циановым (ECFP, донором) и желтым (EYFP, акцептором) мутантами GFP, присоединенными к N- и С-концу МТ, соответственно. Металлотионеины – это внутриклеточные богатые цистеином металлсвязывающие белки с молекулярной массой от 6 до 7кДа. При реакции с NO металлотионеин высвобождает цинк или кадмий. Полученный в результате белок слияния сохранил способность связывать ионы металлов. Добавление ЭДТА и хлорида натрия, вызывающее высвобождение металлов из МТ и его разворачивание, приводило к уменьшению отношения интенсивностей флуоресценции при 535 нм (акцептор) и 480 нм (донор), F535 нм / F 480 нм от 1,8 до 1,1. Более того, добавление Cu1+ к лизату клеток повышает эффективность FRET, что проявляется по увеличению F535 нм / F 480 нм от 1,8 до 2,2. Таким образом, конформационное изменение при высвобождении или связывании металла может быть прослежено с помощью Ферстеровского переноса энергии, который отражает изменения межмолекулярного расстояния и относительной ориентации флуорофоров в ECFP и EYFP (рис. 1). Аналогичная картина наблюдалась при добавлении водного раствора NO к лизату клеток, содержащему белок слияния, когда соотношение F535 нм / F 480 нм уменьшилось от 1,8 до 1,4. Как было показано, NO не изменяет эффективность переноса энергии у свободной от металла формы белка слияния. Применение химерной конструкции на основе GFP обнаружило индуцированное NO конформационное изменение в МТ, указывающее на высвобождение металла, таким образом впервые было продемонстрировано высвобождение металла из МТ в ответ на физиологические стимулы в интактных клетках.

 Рис. 1. Пример типичного использования FRET для наблюдения за конформационными изменениями.Связывание ионов металлов металлотионеином приводит к возникновению плотной упаковки химерной конструкции, в результате чего происходит перенос энергии между ECFP и EGFP.Высвобождение ионов металлов, наоборот, приводит к разворачиванию конструкции и, следовательно, уменьшению FRET .

      Одним из наиболее важных достоинств метода FRET является пространственное (субмикроны) и временное (миллисекунды) разрешение. Наиболее существенным недостатком можно считать то обстоятельство, что перенос энергии наблюдается и в отсутствие каких-либо белковых взаимодействий, наличие этого фонового уровня сужает динамический диапазон измеряемых концентраций. 

V. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Таким образом, прижизненные (или живые, live colors) маркеры являются уникальными инструментами, которые позволяют в живой, постоянно меняющейся клетке отслеживать процессы, развивающиеся на очень быстрой временной шкале. При этом клетка практически не подвергается стрессовому воздействию при введении меченых соединений, а биохимические нарушения в клетке в целом минимальны.Это особенно важно в настоящее время в нейробиологии, где, как известно, молекулярные события, связанные с передачей сигнала, опосредованы изменением концентрации кальция и развиваются на временной шкале от десятых до сотых долей секунды.


Информация о работе Зеленый флуоресцирующий белок