Дезинфекция и стирилизация

 Септабик («Абик», Израиль) относится к группе ПАВ (поверхностно-активных веществ). Обладает высоким антимикробным действием против бактерий, вирусов, грибов. Обладает моющими свойствами. Выпускается в виде концентрата и порошка. Используется для дезинфекции и предстерилизационной очистки, совмещенных в одном процессе против вирусной, бактериальной инфекции, кандидозах, дерматофитии в виде 1% рабочего раствора, экспозиция 60—120 мин (завидит от конструкции прибора) при комнатной температуре. При туберкулезе используется 3% раствор септабика в течение 6.0 мин методом полного погружения, затем мойкй в том же растворе в течение 0,5-1 мин и ополаскивания проточной питьевой водой в течение 3 мин изделий из стекла, резин, пластмасс, металлов, стоматологических инструментов, эндоскопов.

 

 Стерилизация 

 Стерилиза́ция — полное освобождение какого-либо предмета от всех видов микроорганизмов, включая бактерии и их споры, грибы, вирионы, а также от прионного белка, находящихся на поверхностях, оборудовании, в пищевых продуктах и лекарствах. Осуществляется термическим, химическим, радиационным, фильтрационным методами.

 Методы  стерилизации

• Термическая: паровая и воздушная (сухожаровая).
• Химическая: газовая или химическими растворами (стерилянтами)
• Радиационная стерилизация — применяется в промышленном варианте
• Метод мембранных фильтров — применяется для получения небольшого количества стерильных растворов, качество которых может резко ухудшиться при действии других методов стерилизации(бактериофаг, селективные питательные среды, антибиотики)

 

 Термические методы стерилизации

 Преимущества термических методов стерилизации:

• Надёжность
• Отсутствие необходимости удаления стерилянтов с предметов медицинского назначения
• Удобство работы персонала
• Стерилизация проводится в упаковках, что позволяет сохранить стерильность некоторый период времени

 

 Паровая стерилизация

 Осуществляется  подачей насыщенного водяного пара под давлением в паровых стерилизаторах (автоклавах).

 Паровая стерилизация под давлением считается  наиболее эффективным методом, так  как чем выше давление, тем выше температура пара, стерилизующего материал; бактерицидные свойства пара выше, чем воздуха, поэтому для стерилизации применяют пересыщенный пар.

 Паровой стерилизации подвергают изделия из текстиля (бельё, вату , бинты, шовный материал), из резины, стекла, некоторых полимерных материалов, питательные среды, лекарственные препараты.

 Режимы паровой стерилизации

 132 °C — 2 атмосферы(2 кгс/см2) — 20 минут — основной режим. Стерилизуют все изделия (стекло, металл, текстиль, КРОМЕ РЕЗИНОВЫХ).

 120 °C — 1,1 атмосфера(1,1 кгс/см2) — 45 минут — щадящий режим (стекло, металл, резиновые изделия, полимерные изделия — согласно паспорту, текстиль)

 110 °C — 0,5 атмосферы(0,5 кгс/см2) — 180 мин — особо щадящий режим (нестойкие препараты, питательные среды)

 Упаковочные материалы при  паровой стерилизации:

• Стерилизационная коробка (бикс) простая. Срок хранения 3 суток после стерилизации.
• Стерилизационная коробка (бикс) с фильтром. Срок хранения 20 суток после стерилизации.
• Крафт-пакеты со скрепками. Срок хранения - трое суток после стерилизации.
• Крафт-пакеты заклеивающиеся. Срок хранения - 20 суток после стерилизации.
• Ткань (бязь — КРОМЕ МАРЛИ). Срок хранения - трое суток после стерилизации.
• Комбинированные упаковки (прозрачная синтетическая плёнка + бумага)(дгм стеригард). Срок хранения от 180 суток до 720 суток.

 

 Химические  методы стерилизации

 Используются при обработке приборов, аппаратов, сложных оптических систем, крупногабаритных изделий или изделий из титана, полимерных смол, резин.

 Для газовой(холодной) стерилизации используют герметичные контейнеры с парами окиси этилена, формальдегида или специализированными многокомпонентными системами.

 Для химической стерилизации растворами применяются основных четыре группы веществ:

• Кислота+окислитель(например «Первомур»)
• Альдегид(например формалин)
• Детергент(например хлоргексидина биглюконат)
• Галоид(например Повидон-йод)

 Концентрации  и время стерилизации зависит  от используемого антисептика или  дезинфектанта. 

 Стерилизация  ионизирующим излучением

• радиационный метод или лучевую стерилизацию γ-лучами применяют в специальных установках при промышленной стерилизации однократного применения - полимерных шприцев, систем переливания крови, чашек Петри, пипеток и других хрупких и термолабильных изделий.
• Ряд лет в фармтехнологии для стерилизации используется ультрафиолетовое (УФ) (длина волны 253,7 нм). Источники УФ-излучения — ртутные кварцевые лампы. Их мощное бактериостатическое действие основано на совпадении спектра испускания лампы и спектра поглощения ДНК микроорганизмов, что может является причиной их гибели при длительной обработке излучением кварцевых ламп. При недостаточно мощном действии УФ в прокариотической клетке активизируются процессы световой и темновой репарации и клетка может восстановиться. Метод применяется для стерилизации воздуха приточно-вытяжной вентиляции, оборудования в биксах, также для стерилизации дистиллированной воды.

 

 Контроль  стерильности 

 Контроль  качества автоклавирования осуществляют:

 1) бактериологическим  методом — постоянные пробы  па стерильность материала; 

 2) с  помощью инди­каторных бумажек  (метод Микулича)—на обработанной  крахмалом бумаге пишут слово «стерилизовано» и опускают бумагу в раствор Люголя. Она принимает интенсивно-синий цвет, и надпись становится невидна. 

 При 115 °С в автоклаве бумага обесцвечивается, и слово «стерилизовано» становится отчетливо видимым; 3) с помощью  порошкообразных веществ, сплавляющихся при достижении определенной температуры: сера — 111 —120 СС, антипирин — 113°С, ан­тифебрин — 115°С, мочевина — 132 °С. 

 Качество  обработки хирургических инструментов, шприцев, игл и частей аппаратов  определяют как проверкой их стерильности, так и путем постановки бепзидшювой пробы на наличие следов крови, 

 Бензидиновый  реактив годен только в течение  часа. В шприц наливают 3 кап­ли бензидннового  реактива и несколько раз передвигают  поршень, результат оценивается  через 3 мин. При наличии малейших следов кровн реактив становится зеленым. Иглы проверяют таким же образом. Через 3 мин реактив выпускают на белую ткань или бумагу; изменение окраски реактива свидетельствует о наличии следов крови. 

 Приготовление бензидинового реактива: в пробирку наливают 2 мл ледяной уксусной кислоты, добавляют немного бензидина и встряхивают смесь, затем добавляют 4 мл 3 % раствора перекиси водорода и снова тщательно встряхивают. Качество реактива проверяют нанесением 2 его капель на кровяное пятно. Появление зеленого цвета свидетельствует о пригодности реактива. 

 Контроль  стерильности проводится не реже одного раза в 10—14 дней. По­севы с рук  хирургов и операционных сестер, инструментов и различных предметов в операционной берут стерильными ватными или марлевыми шариками, смоченными стерильным изотоническим раствором натрия хлорида непосредственно перед операцией. Материал помещают в пробирку со стерильным изотоническим раствором натрия хлорида или сахарным бульоном и в тот же день направляют в бактериологическую лабораторию. Персонал не должен знать, когда и у кого будет   взят   посев. 

 Посевы  воздуха в операционной осуществляют на чашках Петри с питательным  агаром или с помощью аппарата Кротова. Открытые чашки расставляют  в различных местах операционной на 15 мин. Количество микробов в 1 м3 воз­духа в операционной до работы не должно превышать 500,-а после работы — 1000. 

 Перевязочный  материал доставляют в лабораторию  в закрытых биксах после стерилизации. 

 Посевы  с шовного материала осуществляют до стерилизации, во время нес и в процессе хранения — не реже одного раза в 10 дней. Забор материала проводится с соблюдением всех правил асептики. Каждую пробу берут отдельным инструментом и помещают в стерильную пробирку. Материал признается стерильным, если рост микробов не получен. 

 Результаты  посевов фиксируют в специальном  журнале, где указывают дату посева, характер исследуемого материала, способ стерилизаций, отмечают полученный результат  и указывают фамилию производившего исследование.

 

 Заключение

 Дезинфекция в ЛПУ в первую очередь проводится для предотвращения внутри больничной инфекции (ВБИ) . В настоящее время есть множество средств и способов, что бы проводить такую обработку, и тем самым не подвергать опасности жизни и здоровье, как медицинского персонала, так и пациентов, которые обратились в данное ЛПУ.

  Для эффективности  проведения дезинфекции, используются  различные способы, включающие различные приемы, такие, как механические, физические или химические.

 Осознание медицинским  работником того, что от правильности и эффективности, дезинфекции или стерилизации, зависит жизнь и здоровье пациента –это самое главное в профилактике ВБИ.

 

 Список  литературы  

1. Вашков  В.И. Средства и методы стеризации, применяемые  в медицине, М., 1973
2. Кутушев Ф. Х., Либов А. С. Мичурин Н.В. Справочник хирурга поликлиники., 1982г. 
3. Тимофеев Н.С. и Тимофеев Н.Н. Асептика и антисептика, с. 14, М., 1980
4. www.Medicainfo.ru